Le rapport sur l’hémogramme MYLAV change d’apparence. Cette évolution répond à la nécessité de s’adapter aux technologies les plus récentes tout en répondant aux attentes des cliniciens. L’objectif est de simplifier les informations présentes dans l’hémogramme pour les rendre plus claires et facilement exploitables. Voici les principaux changements.

La technologie utilisée
Nous passons de l’ancien système ADVIA-Siemens au plus récent Sysmex, un instrument combinant la technologie d’impédance électrique avec la technologie laser.

La majorité des données classiques d’une analyse sanguine restent inchangées, mais le nouveau rapport inclut quelques fonctionnalités supplémentaires, détaillées ci-dessous par lignée cellulaire.

Érythrocytes

La combinaison des technologies d’impédance et de lecture optique permet de conserver toutes les informations présentes dans l’ancien rapport. Cependant, certains sigles ont été modifiés :

  • Le nombre d’érythrocytes (RBC), l’hématocrite (HCT), la concentration d’hémoglobine totale (HGB) et la largeur de distribution des volumes globulaires rouges (RDW) restent inchangés.
  • L’hémoglobine intraérythrocytaire (précédemment « HGB cellulaire ») est désormais désignée HGB-O.
  • Les indices érythrocytaires classiques (MCV, MCH, MCHC) restent inchangés.
  • La teneur moyenne en hémoglobine (précédemment « CH ») est désormais appelée RBC-He, et la concentration moyenne en hémoglobine (précédemment « CHCM ») devient MCHC-O.
  • Le système Sysmex permet une quantification précise des globules rouges nucléés (nRBC), avec deux nouvelles valeurs rapportées : 
    • Le nombre d’érythrocytes nucléés pour 100 leucocytes (nRBC/100 WBC).
    • La valeur absolue des érythrocytes nucléés (nRBC x 10³/µL).

Réticulocytes

Le profil des réticulocytes a été simplifié pour ne conserver que les paramètres les plus cliniquement pertinents, déjà présents dans l’ancien rapport :

  • Le pourcentage et le nombre absolu de réticulocytes (RET).
  • Les pourcentages de réticulocytes faiblement fluorescents (L-RET), moyennement fluorescents (M-RET) et fortement fluorescents (H-RET), correspondant respectivement aux réticulocytes matures, moyennement immatures et très immatures. Les deux dernières catégories sont regroupées sous la valeur globale des réticulocytes immatures (IRF), comme dans l’ancien rapport.
  • La teneur en hémoglobine des réticulocytes, auparavant exprimée en CHr, est désormais indiquée sous la forme Ret-He.
  • Comme précédemment, le pourcentage corrigé des réticulocytes est calculé en fonction de l’hématocrite et de l’indice de production des réticulocytes (RPI).

 

Leucocytes

Les données relatives au leucogramme restent inchangées par rapport à l’ancien rapport :

  • Le nombre total de leucocytes (WBC).
  • Le nombre et le pourcentage des différentes populations leucocytaires (neutrophiles, éosinophiles, basophiles, lymphocytes et monocytes, incluant les band-cells si présents).

Cependant, il est important de noter que le nombre total de leucocytes correspond désormais à celui précédemment corrigé (WBC corr.). Cette correction, qui dépendait du nombre de globules rouges nucléés observés au microscope, n’est plus nécessaire grâce au Sysmex, qui les compte séparément.

Plaquettes

Pour les plaquettes, seules les données les plus cliniquement pertinentes sont incluses, comme dans l’ancien rapport :

  • Nombre de plaquettes (PLT).
  • Volume plaquettaire moyen (MPV).
  • Taux plaquettaire (PCT).
  • Fraction de grosses plaquettes (P-LCR).

Nouvelle fonctionnalité : chez les animaux thrombocytopéniques, le pourcentage de plaquettes immatures (IPF) est désormais inclus. Ce paramètre permet de distinguer une thrombocytopénie périphérique (augmentation de l’IPF) d’une thrombocytopénie d’origine médullaire (IPF normal ou réduit).

Observations morphologiques

Les anomalies morphologiques des populations cellulaires sanguines, observées au microscope, continuent d’être signalées dans le rapport. Cela inclut également tout autre résultat pathologique détecté sur le frottis sanguin, comme la présence d’agents infectieux.

Bibliographie

1: Guerlin M, Granat F, Grebert M, Braun JP, Geffré A, Bourgès-Abella N, Trumel C. Validation of the Sysmex XN-V hematology analyzer for feline specimens. Vet Clin Pathol. 2024 Sep;53(3):294-308.

2: Perez-Ecija A, Martinez C, Fernandez-Castañer J, Mendoza FJ. Utility of immature platelet fraction in the Sysmex XN-1000V for the differential diagnosis of central and peripheral thrombocytopenia in dogs and cats. J Vet Intern Med. 2024 May-Jun;38(3):1512-1519.

3: Ginders J, Stirn M, Novacco M, Hofmann-Lehmann R, Riond B. Validation of the Sysmex XN-V Automated Nucleated Red Blood Cell Enumeration for Canine and Feline EDTA-Anticoagulated Blood. Animals (Basel). 2024 Jan 30;14(3):455.

4: Perez-Ecija A, Martinez C, Fernandez-Castañer J, Mendoza FJ. The Immature Reticulocyte Fraction (IRF) in the Sysmex XN-1000V Analyzer Can Differentiate between Causes of Regenerative and Non-Regenerative Anemia in Dogs and Cats. Animals (Basel). 2024 Jan 22;14(2):349.

5: Jornet-Rius O, Mesalles-Naranjo M, Pastor J. Performance of the Sysmex XN-V hematology analyzer in determining the immature platelet fraction in dogs: A preliminary study and reference values. Vet Clin Pathol. 2023 Sep;52(3):433-442.

6: Grebert M, Granat F, Braun JP, Leroy Q, Bourgès-Abella N, Trumel C. Validation of the Sysmex XN-V hematology analyzer for canine specimens. Vet Clin Pathol. 2021 Jun;50(2):184-197.

 

 

Saverio Paltrinieri, DMV, EBVS European Specialist in Veterinary Clinical Pathology (Dipl. ECVCP); Expert MYLAV en Pathologie Clinique

Ugo Bonfanti, DMV, EBVS European Specialist in Veterinary Clinical Pathology (Dipl. ECVCP); Directeur medical de MYLAV 

Walter Bertazzolo, DMV, EBVS European Specialist in Veterinary Clinical Pathology (Dipl. ECVCP); Directeur scientifique de MYLAV