L’examen cytologique est une m\u00e9thode de diagnostic tr\u00e8s courante en m\u00e9decine v\u00e9t\u00e9rinaire: rapide, facile \u00e0 r\u00e9aliser et peu co\u00fbteuse. Il peut apporter des informations diagnostiques dans de nombreuses disciplines cliniques (dermatologie, oncologie, m\u00e9decine interne, etc.).<\/p>\n
Le cytologiste, appel\u00e9 \u00e0 assister le clinicien dans la r\u00e9solution du cas clinique, se retrouve \u00e0 devoir op\u00e9rer en interpr\u00e9tant les pr\u00e9parations dans un monde de lumi\u00e8res et de couleurs qui prennent magiquement forme dans les yeux experts du lecteur.<\/p>\n
L’un des aspects les plus frustrants, tant pour le cytologiste que pour le v\u00e9t\u00e9rinaire r\u00e9f\u00e9rent, est l’obtention de r\u00e9sultats non diagnostiques, en particulier lorsque le mat\u00e9riel soumis est de mauvaise qualit\u00e9 ou non repr\u00e9sentatif de la l\u00e9sion \u00e9chantillonn\u00e9e, en raison du mauvais choix et de la mauvaise ex\u00e9cution de la m\u00e9thode d’\u00e9chantillonnage. Il en r\u00e9sulte \u00e9galement une frustration de la part du client qui a pay\u00e9 pour le test sans avoir obtenu d’indications utiles pour la gestion du probl\u00e8me dont souffre son animal.<\/p>\n
Afin d’optimiser l’\u00e9chantillonnage cytologique, il existe certaines r\u00e8gles \u00e0 suivre et des conseils qui, lorsqu’ils sont respect\u00e9s, peuvent r\u00e9duire consid\u00e9rablement le pourcentage d’\u00e9chantillons \u00ab\u00a0acellulaires ou non concluants\u00a0\u00bb.<\/p>\n
Dans cette interview, le Dr Walter Bertazzolo<\/strong>, directeur scientifique du laboratoire Mylav, propose 10 r\u00e8gles pour un bon pr\u00e9l\u00e8vement cytologique<\/strong>.<\/p>\n Pour obtenir un bon r\u00e9sultat, la personne qui pr\u00e9l\u00e8ve l’\u00e9chantillon est bien plus importante que celle qui l’examine au microscope! En effet, un \u00e9chantillon de mauvaise qualit\u00e9 sera toujours non concluant, m\u00eame s’il est envoy\u00e9 au meilleur cytopathologiste du monde.<\/li>\n En pr\u00e9sence de n\u00e9oformations, il est toujours conseill\u00e9 de proc\u00e9der d’abord \u00e0 un pr\u00e9l\u00e8vement cytologique car il est moins invasif, peu co\u00fbteux et a un temps de r\u00e9ponse plus rapide. Cependant, dans de nombreuses pathologies organiques, la cytologie peut ne pas \u00eatre tr\u00e8s indicative et une biopsie histologique est n\u00e9cessaire pour obtenir le diagnostic. Les \u00e9chantillons cytologiques pr\u00e9lev\u00e9s sur le foie et les reins chez les patients suspect\u00e9s d’h\u00e9patopathie et\/ou de n\u00e9phropathie en sont un exemple : tr\u00e8s souvent, ils ne fournissent aucune information utile au clinicien. En cas de doute, il est conseill\u00e9 de demander l’avis du laboratoire avant de s’aventurer dans des proc\u00e9dures qui peuvent s’av\u00e9rer inutiles, invasives et dont les r\u00e9sultats sont incertains.<\/li>\n L\u00e0 encore, il n’y a pas de r\u00e9ponse unique, car tout d\u00e9pend de ce que nous devons pr\u00e9lever. Lorsqu’il s’agit d’analyser une n\u00e9oformation nodulaire ou un organe qui \u00ab\u00a0donne\u00a0\u00bb facilement des cellules (ganglion lymphatique, foie, tissu glandulaire, etc.), le pr\u00e9l\u00e8vement \u00e0 l’aiguille fine est certainement \u00e0 privil\u00e9gier. L’apposition est r\u00e9serv\u00e9e aux l\u00e9sions ulc\u00e9r\u00e9es ou aux surfaces coup\u00e9es d’un tissu \u00e0 analyser, en prenant soin d’\u00e9liminer l’exc\u00e8s de sang et les d\u00e9bris de surface, inutiles au diagnostic. Le brossage et le grattage sont presque toujours \u00e0 \u00e9viter car ils ne recueillent que du mat\u00e9riel superficiel ; ils peuvent \u00eatre utiles pour l’analyse de la partie superficielle d’une muqueuse (nasale par exemple). Enfin, pour les pr\u00e9parations de biopsies endoscopiques, il est conseill\u00e9 d’effectuer un squash-prep, qui consiste \u00e0 \u00e9craser vigoureusement un fragment de tissu entre deux lames.<\/li>\n Pour pouvoir analyser les cellules, celles-ci doivent \u00eatre dispos\u00e9es sur la lame en couche mince (monocouche), car les colorants rapides de type Romanowsky utilis\u00e9s en clinique n\u00e9cessitent une couche mince de cellules pour permettre aux colorants de p\u00e9n\u00e9trer dans celles-ci. Pour ce faire, on \u00e9tale d\u00e9licatement le mat\u00e9riel pr\u00e9lev\u00e9 entre deux lames de verre, en profitant de la pression exerc\u00e9e par les deux lames et en veillant \u00e0 ne pas exercer une force excessive, qui endommagerait les cellules et, par cons\u00e9quent, affecterait la lecture de la pr\u00e9paration.<\/li>\n Cette \u00e9tape est g\u00e9n\u00e9ralement la plus n\u00e9glig\u00e9e par les cliniciens, mais c’est peut-\u00eatre la plus importante. Pour permettre une bonne coloration de la lame, les cellules, une fois macul\u00e9es, doivent \u00eatre s\u00e9ch\u00e9es \u00e0 l’air, par exemple en secouant rapidement la lame. Les sprays fixateurs chimiques ne doivent jamais \u00eatre utilis\u00e9s (sauf dans de rares cas exceptionnels et pour des colorations particuli\u00e8res telles que le Papanicolau ou l’h\u00e9matoxyline-\u00e9osine).<\/p>\n Le processus de fixation rapide \u00e0 l’air est particuli\u00e8rement important pour les \u00e9chantillons cytologiques compos\u00e9s de liquides ou contenant beaucoup de sang (par exemple, liquide synovial, \u00e9panchements, moelle osseuse, etc.), pour lesquels un s\u00e9chage trop lent est une cause quasi certaine d’\u00e9chec. Dans ces cas, il est utile d’utiliser une source de chaleur (par exemple un s\u00e8che-cheveux) pour fixer rapidement l’\u00e9chantillon. Les \u00e9chantillons doivent toujours \u00eatre bien s\u00e9ch\u00e9s avant d’\u00eatre plac\u00e9s dans les bo\u00eetes de lames qui seront envoy\u00e9es au laboratoire.<\/li>\n S\u2019ils sont conserv\u00e9s dans un endroit sec et \u00e0 l’abri de la poussi\u00e8re, les frottis peuvent \u00eatre conserv\u00e9s pendant plusieurs jours, voire plusieurs semaines. Cependant, certaines erreurs courantes doivent \u00eatre \u00e9vit\u00e9es: avant la coloration finale, il faut \u00e9viter de mouiller les lames, car les cellules se d\u00e9tacheraient de la lame; un aspect tr\u00e8s n\u00e9glig\u00e9, et la cause de fr\u00e9quents \u00e9chantillons \u00ab\u00a0ininterpr\u00e9tables\u00a0\u00bb, est d’utiliser des lames stock\u00e9es dans la clinique \u00e0 proximit\u00e9 du formol ou, plus commun\u00e9ment, d’envoyer des \u00e9chantillons cytologiques et histologiques au laboratoire dans le m\u00eame emballage. Le formol est une substance tr\u00e8s volatile et, m\u00eame si les pots sont herm\u00e9tiquement ferm\u00e9s, ses vapeurs s’\u00e9chappent et, une fois en contact avec les cellules ou les lames, ne permettent pas aux colorants de p\u00e9n\u00e9trer de mani\u00e8re optimale, rendant ainsi les \u00e9chantillons ininterpr\u00e9tables.<\/li>\n Bien entendu, de nombreuses autres variables doivent \u00eatre prises en compte dans ce cas : la coop\u00e9ration du patient, la douleur du site de pr\u00e9l\u00e8vement, le risque de complications en cas de ponctions multiples, etc. Dans tous les cas, il est conseill\u00e9 d’envoyer toutes les lames pr\u00e9par\u00e9es, m\u00eame celles qui semblent macroscopiquement peu cellulaires.<\/li>\n Pour \u00e9viter d’envoyer des \u00e9chantillons non diagnostiques, il peut \u00eatre pratique de colorer une ou plusieurs lames et d’\u00e9valuer la pr\u00e9sence ou non de mat\u00e9riel significatif et, s’il y a des cellules, de soumettre les \u00e9chantillons au laboratoire. Si les \u00e9chantillons sont acellulaires, on peut essayer de pr\u00e9lever un nouvel \u00e9chantillon de la l\u00e9sion ou envisager un examen histopathologique.<\/p>\n Avec un minimum d’exp\u00e9rience au microscope, et sans n\u00e9cessairement \u00eatre un cytologiste exp\u00e9riment\u00e9, cette proc\u00e9dure nous aide \u00e0 am\u00e9liorer et \u00e0 comprendre \u00e0 la fois quand un \u00e9chantillon n’est pas cellulaire ou repr\u00e9sentatif de la l\u00e9sion et quelle est la raison de l’\u00e9chec. Vous devriez \u00e9galement envoyer les lames qui ont \u00e9t\u00e9 color\u00e9es en tant que \u00ab\u00a0v\u00e9rification de l’ad\u00e9quation\u00a0\u00bb afin d’\u00e9viter le risque que la seule lame diagnostique soit celle que vous avez v\u00e9rifi\u00e9e.<\/li>\n N’h\u00e9sitez pas \u00e0 contacter les Experts de Mylav, qui pourront vous donner des conseils utiles au cas par cas.<\/li>\n Si la cytologie n’est pas diagnostique, n’est pas r\u00e9alisable ou est inutile dans ce cas pr\u00e9cis, il reste toujours la possibilit\u00e9 de recourir \u00e0 un pr\u00e9l\u00e8vement histologique, qui est toujours \u00ab\u00a0le gold standard\u00a0\u00bb.<\/li>\n<\/ul>\n Merci Walter pour vos pr\u00e9cieux conseils!<\/strong><\/p>\n\n
\nR\u00e8gle n\u00b0 1: Le clinicien est plus important que le cytologiste.<\/h4>\n
\nR\u00e8gle n\u00b0 2: Nous essayons d’utiliser la logique et notre t\u00eate avant de proc\u00e9der avec nos mains.<\/h4>\n
\nR\u00e8gle n\u00b0 3: Il n’existe pas de m\u00e9thode d’\u00e9chantillonnage infaillible et parfaite.<\/h4>\n
\nR\u00e8gle 4: Toujours obtenir une \u00ab\u00a0monocouche\u00a0\u00bb de cellules.<\/h4>\n
\nR\u00e8gle n\u00b0 5: Fixer l’\u00e9chantillon imm\u00e9diatement.<\/h4>\n
\nR\u00e8gle n\u00b0 6: Les pr\u00e9parations cytologiques sont r\u00e9sistantes, mais pas \u00e0 tout !<\/h4>\n
\nR\u00e8gle 7: Plus vous pr\u00e9levez d’\u00e9chantillons, plus vous avez de chances d’obtenir un diagnostic.<\/h4>\n
\nR\u00e8gle 8: Apprenez de vos erreurs (ou de celles des autres).<\/h4>\n
\nR\u00e8gle n\u00b0 9: Adressez-vous toujours \u00e0 des coll\u00e8gues plus exp\u00e9riment\u00e9s que vous.<\/h4>\n
\nR\u00e8gle 10: il reste toujours la biopsie histologique.<\/h4>\n